Искусственная активация ооцитов – положительное влияние на лабораторный и клинический исход с витрифицированными донорскими яйцеклетками

Авторы

  • Н.П. Нигматова
  • Б.Ж. Абдильманова
  • Б.Б. Калдарбекова
  • Г.Г. Арстанбаева
  • Е. Буянжаргал
  • К.Б. Кажибеков
  • Н.М. Хоник
  • В.Н. Щиголев

DOI:

https://doi.org/10.37800/RM2021-1-5

Ключевые слова:

донация, ооциты, рабочие бластоцисты, искусственная активация, ЭКО, бесплодие

Аннотация

Донорство ооцитов является установленным трендом в лабораторной и клинической практике. Витрификация донорских ооцитов в целях создания криобанка – это целесообразный и эффективный процесс. В то же время, для клинической эффективности также важно количество размораживаемых донорских ооцитов, рекомендуемо в среднем 10-15 яйцеклеток. В данном исследовании мы демонстрируем, что за счет использования искусственной активации можно уменьшить количество размораживаемых донорских ооцитов, соответственно, сделать программу более доступной для пациентов без вреда для лабораторных и клинических показателей.
Цель исследования: Цель исследования – улучшить качество бластоцист при использовании искусственной активации с витрифицированными донорскими ооцитами. Можно ли увеличить за счет этого шансы на наступление беременности и рождение ребенка при размораживании небольшого количества ооцитов – 6-8?
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ: В ретроспективное исследование были включены 40 свежих (Группа А) и 12 донорских программ с витрифицированными ооцитами (Группа Б). У всех как метод оплодотворения применено ИКСИ. В группе Б была также применена искусственная активация ооцитов методом ионофора кальция. Для вычисления статистической разницы между группами был использован Т тест Стьюдента. Значение P<0.05 рассматривалось как статистически значимая разница.
РЕЗУЛЬТАТЫ: Основная масса рабочих бластоцист 93% (14/15) в группе Б и 72% в группе А, сформировалась на 5 сутки. Частота наступления клинической беременности (ЧНКБ) не различается между группами А и Б и составляет 52.5% и 50% соответственно. Частота пролонгированной беременности составляет 50% в группе А и 33% в группе Б. Частота имплантации незначительно выше в группе Б, 42%, по сравнению с группой А, 39%. Частота рождения детей выше в группе А (50%) по сравнению с группой Б (25%), но разница статистически не значимая.
ВЫВОДЫ: Исходя из данных нашего исследования, мы считаем, что искусственную активацию ооцитов целесообразно применять с витрифицированными донорскими ооцитами. Это позволит сократить расходы клиники, разделив клетки одного донора на несколько программ, позволит исключить синхронизацию свежего донора и реципиента для переноса эмбрионов, и позволит снизить затраты пациентов не уменьшая шансы на успех.

Библиографические ссылки

Cobo A., Meseguer M., Remohi J., Pellicer A. Use of cryo-banked oocytes in an ovum donation programme: a prospective, randomized, controlled, clinical trial. Human Reproduction. 2010; 25(9); 2239-2246. Doi:10.1093/humrep/deq146.

Practice Committee of American Society for Reproductive Medicine and Practice Committee of Society of Assisted Reproduction Technology. 2008 guidelines for gamete and embryo donation: a practice committee report. Fertility Sterility. 2008; 90(5): S30-44. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2008.08.090.

Kuwayama, M. Highly efficient vitrification for cryopreservation of human oocytes and embryos: the Cryotop method. Theriogenology. 2007; 67(1): 73-80. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2006.09.014.

Rienzi L., Cobo A., Paffoni A., Scarduelli C., Capalbo A., Vajta G. et al. Consistent and predictable delivery rates after oocyte vitrification: an observational longitudinal cohort multicentric study. Human Reproduction. 2012; 27(6): 1606-1612. DOI: 10.1093/humrep/des088.

Herrero L., Pareja S., Aragones M., Cobo A., Bronet F., Garcia-Velasco J.A. Oocyte versus embryo vitrification for delayed embryo transfer: an observational study. 2014; 29: 567-572. DOI:https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2014.07.016.

Cobo A., Garrido N., Pellicer A., Remohi, J. Six years’ experience in ovum donation using vitrified oocytes: report of cumulative outcomes, impact of storage time, and development of a predictive model for oocyte survival rate. Fertility Sterility. 2015; 104(6): 1426-1434. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2015.08.020.

Scott L., Alvero R., Leondires M., Miller, B. The morphology of human pronuclear embryos is positiviely related to blastocyst development and implantation. Human Reproduction. 2000; 15: 2394-2403. DOI:10.1093/humrep/15.11.2394.

Gardner D.K. and Schoolcraft W.B. In vitro culture of human blastocysts. In Jansen, R. and Mortimer, D. (eds). Toward Reproductive Certainty: Fertility and Genetics Beyond 1999. 1999a. London: Parthenon Publishing 378–388.

Gardner D.K. and Schoolcraft W.B. Culture and transfer of human blastocysts. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology. 1999b; 11:307–331. DOI: 10.1097/00001703-199906000-00013.

Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. HumanReproduction. 2011; 26(6):1270–1283. https://doi.org/10.1093/humrep/der037.

Формулы для статистического анализа https://www.socscistatistics.com/tests/kolmogorov/default.aspx

Pouwer A.W., Farquhar C., Kremer J.A.M. Long-acting FSH versus daily FSH for women undergoing assisted reproduction. 2012. DOI: 10.1002/14651858.CD009577.pub2.

Yovich J.L., Keane K.N., Borude G., Dhalival S.S., Hinchliffe P.M. Finding a place for corifollitropin within the PIVET FSH dosing algorithms. Reproductive Biomedicine Online. 2018; 36: 47-58. DOI: 10.1016/j.rbmo.2017.09.017.

De Los Santos M.J., Apter S., Coticchio G., Debrock S., Lundin K., Plancha C.E., Prados F., Rienzi L., Verheyen G., Woodward B., Vermeulen N. Revised guidelines for good practice in IVF laboratories. Human Reproduction. 2015; 31(4):685-6. doi: 10.1093/humrep/dew016. Epub 2016 Feb 17.

Vajta G., Rienzi L., Ubaldi, F.M. Open versus closed systems for vitrification of human oocytes and embryos. Reproductive BioMedicine Online. 2015; 30: 325-333. Doi: 10.1016/j.rbmo.2014.12.012.

Cai H., Niringiyumukiza J.D., Li Y., Lai Q., Su P., Xiang, W. Open versus closed vitrification system of human oocytes and embryos: a systematic review and meta-analysis of embryologic and clinical outcomes. Reproductive Biology and Endocrinology. 2018; 16 (123). Doi: 10.1186/s12958-018-0440-0.

Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine and the Society for Assisted Reproductive Technology. Mature oocyte cryopreservation: a guideline. Fertility Sterility. 2013; 99(1): 37-43. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.09.028.

Borges E., de Almeida Ferreira Braga D.P., de Sousa Bonetti T.C., Iaconelli A., Goncalves Franco J. Artificial oocyte activation with calcium ionophore A23187 in intracytoplasmic sperm injection cycles using surgically retrieved spermatozoa. Fertility Sterility. 2008; 92 (1): 131-136. Doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.04.046

Ebner T., Oppelt P., Wober M., Staples P., Mayer R.B., Sonnleitner U et al. Treatment with Ca2+ ionophore improves embryo development and outcome in cases with previous developmental problems: a prospective multicenter study. Human Reproduction. 2014. Doi: 10.1093/humrep/deu285

Phan V.Y., Littman E., Harris D., La A. Pregnancy after the calcium ionophore activation and aneuploid screening using A-CGH in globozoospermia patient. Human Genetics and Embryology. 2015. http://dx.doi.org/10.4172/2161-0436.1000123.

Capalbo A., Ottolini C.S., Griffin D.K., Ubaldi F.M., Handyside A.H., Rienzi, L. Artificial oocyte activation with calcium ionophore does not cause a widespread increase in chromosome segregation errors in the second meiotic division of the oocyte. Fertility Sterility. 2016; 105(3): 807-813. http://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2015.11.017.

Дополнительные файлы

Опубликован

01.04.2021

Как цитировать

[1]
Нигматова, Н., Абдильманова, Б. , Калдарбекова, Б., Арстанбаева, Г., Буянжаргал, Е., Кажибеков, К., Хоник, Н. и Щиголев, В. 2021. Искусственная активация ооцитов – положительное влияние на лабораторный и клинический исход с витрифицированными донорскими яйцеклетками. Репродуктивная медицина. 1 (46) (апр. 2021), 55–62. DOI:https://doi.org/10.37800/RM2021-1-5.